تأثیر فولیک اسید و نیکوتینیک اسید بر سطح مالون دی‌‌آلدئید مایع سیمن مردان الیگواسپرمی پس از فرایند انجماد

نوع مقاله : مقاله های پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم تشریحی، دانشکده‌ی پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران

2 کارشناس، آزمایشگاه باروری- ناباروری حضرت مریم (س)، بیمارستان شهید بهشتی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران

3 استاد، گروه علوم تشریحی، دانشکده‌ی پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران

چکیده

مقدمه: گونه‌های فعال اکسیژن (Reactive oxygen species یا ROS) یکی از مهم‌ترین عوامل آسیب‌رسان بر کیفیت اسپرم در طی فرایند انجماد می‌باشند که باعث افزایش میزان پراکسیداسیون لیپیدی (Lipid peroxidation یا LPO) غشای سلول می‌باشد. مطالعه‌ی حاضر، با هدف اندازه‌گیری غلظت مالون دی‌آلدئید (Malondialdehyde یا MDA) در مایع سیمن مردان الیگواسپرمی پیش و پس از فرایند انجماد و بررسی تأثیر فولیک اسید و نیکوتینیک اسید بر غلظت MDA این افراد پس از فرایند انجماد انجام شد.روش‌ها: در این مطالعه‌ی تجربی، نمونه‌ی مایع سیمن از 25 مرد الیگواسپرمی در محدوده‌ی سنی 45-25 سال جمع‌آوری گردید. هر نمونه به 5 گروه شامل گروه تازه (Fresh) ، گروه انجماد بدون آنتی‌اکسیدان (شاهد)، گروه انجماد با نیکوتینک اسید (10 میلی‌مول)، گروه انجماد با فولیک اسید (50 نانومول) و گروه انجماد با ترکیبی از نیکوتینک اسید (10 میلی‌مول) + فولیک اسید (50 نانومول) تقسیم شدند. میزان غلظت MDA با استفاده از اسپکتروفتومتر در طول موج 535 نانومتر بر حسب نانومول/میلی‌لیتر در هر گروه ارزیابی گردید.یافته‌ها: مطالعه‌ی حاضر نشان داد که میانگین غلظت MDA در مایع سیمن پس از فرایند انجماد (12/0 ± 73/1 نانومول/میلی‌لیتر) در مقایسه با قبل از انجماد (02/0 ± 45/0 نانومول/میلی‌لیتر) افزایش یافت (001/0 > P). همچنین، میانگین غلظت MDA در گروه فولیک اسید + نیکوتینیک اسید (06/0 ± 68/0 نانومول/میلی‌لیتر) در مقایسه با سایر گروه‌های بعد از انجماد کمتر بود (001/0 > P).نتیجه‌گیری: ترکیب آنتی‌اکسیدان‌های فولیک اسید و نیکوتینیک اسید همراه محیط انجماد اسپرم منجر به کاهش سطح MDA و LPO غشای اسپرم در طی فرایند انجماد و حفظ پتانسیل باروری مردان الیگواسپرمی می‌شود.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

The Effect of Folic Acid and Nicotinic Acid on Malondialdehyde Levels of Semen in Oligospermia Men after Cryopreservation

نویسندگان [English]

  • Zahra Sadeghi 1
  • Shahla Ishaqi 2
  • Gholam Reza Dashti 3
1 MSc Student, Department of Anatomical Sciences, School of Medicine, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran
2 Laboratory Technician, St. Maryam Fertility and Infertility Center, Behesti Hospital, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran
3 Professor, Department of Anatomical Sciences, School of Medicine, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran
چکیده [English]

Background: Reactive oxygen species (ROS) are of the most important detrimental factors on sperm quality during freezing process, which increases the lipid peroxidation (LPO) of cell membranes. In this study, the concentration of malondialdehyde (MDA) levels in semen of men with oligospermia before and after cryopreservation process was measured to evaluate the effect of folic acid and nicotinic acid on the MDA concentration after freezing.Methods: In this experimental study, semen fluid sample was collected from 25 men with oligospermia in age range of 25-45 years. Each sample was divided into 5 groups: Fresh group, Freeze group without antioxidants (control), Freeze group with nicotinic acid (10 mM), Freeze group with folic acid (50 nM), and Freeze group with a combination of nicotinic acid (10 mm) + folic acid (50 nM). The concentration of MDA in nmol/ml was measured in each group with spectrophotometer at 535 nm.Findings: The mean concentration of MDA in semen increased after freezing (1.73 ± 0.12) compared to before freezing (0.45 ± 0.02) (P < 0.001). Mean concentration of MDA in the group of folic acid + nicotinic acid (0.68 ± 0.06) was lower compared to other groups after freezing (P ± 0.001).Conclusion: The combination of folic acid and nicotinic acid antioxidants with sperm freezing medium reduces the level of MDA and LPO of sperm membrane during freezing process, and thereby maintains the fertility potential in men with oligospermia.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Folic acid
  • Nicotinic acid
  • Malondialdehyde
  • Semen
  • Oligospermia
  • Cryopreservation

مراجع

  1. Nachtigall RD. International disparities in access to infertility services. Fertil Steril 2006; 85(4): 871-5.
  2. Moghadam A, Delpisheh A, Sayehmiri K. The prevalence of infertility in Iran. A systematic review. Iran J Obstet Gynecol Infertil 2014; 16(81): 1-7. [In Persian].
  3. Oberoi B, Kumar S, Talwar P. Study of human sperm motility post cryopreservation. Med J Armed Forces India 2014; 70(4): 349-53.
  4. Verza S, Feijo CM, Esteves SC. Resistance of human spermatozoa to cryoinjury in repeated cycles of thaw-refreezing. Int Braz J Urol 2009; 35(5): 581-90.
  5. Sa-Ardrit M, Saikhun J, Thongtip N, Damyang M, Mahasawangkul S, Angkawanish T, et al. Ultrastructural alterations of frozen-thawed Asian elephant (Elephas maximus) spermatozoa. Int J Androl 2006; 29(2): 346-52.
  6. Esmaeili V, Shahverdi AH, Moghadasian MH, Alizadeh AR. Dietary fatty acids affect semen quality: A review. Andrology 2015; 3(3): 450-61.
  7. Fazeli F, Salimi S. Correlation of seminal plasma total antioxidant capacity and malondialdehyde levels with sperm parameters in men with idiopathic infertility. Avicenna J Med Biochem 2016; 4(1): 4-29736.
  8. Sariozkan S, Bucak MN, Tuncer PB, Ulutas PA, Bilgen A. The influence of cysteine and taurine on microscopic-oxidative stress parameters and fertilizing ability of bull semen following cryopreservation. Cryobiology 2009; 58(2): 134-8.
  9. Ayala A, Munoz MF, Arguelles S. Lipid peroxidation: Production, metabolism, and signaling mechanisms of malondialdehyde and 4-hydroxy-2-nonenal. Oxid Med Cell Longev 2014; 2014: 360438.
  10. Collodel G, Moretti E, Micheli L, Menchiari A, Moltoni L, Cerretani D. Semen characteristics and malondialdehyde levels in men with different reproductive problems. Andrology 2015; 3(2): 280-6.
  11. Das P, Choudhari AR, Singh AK, Singh R. Correlation among routine semen parameters, sperm viabilty and malondialdehyde levels in human subjects with different fertility potential. Indian J Physiol Pharmacol 2009; 53(3): 253-8.
  12. Banday MN, Lone FA, Rasool F, Rashid M, Shikari A. Use of antioxidants reduce lipid peroxidation and improve quality of crossbred ram sperm during its cryopreservation. Cryobiology 2017; 74: 25-30.
  13. Ghasemi N, Dashti G, Amoozgar F, Vaez SA. Effect of cholesterol, iron and vitamin E on protamine deficiency and dna fragmentation of male rabbit sperm. J Isfahan Med Sch 2013; 31(259): 1769-78. [In Persian].
  14. Lee YJ, Lee SH, Lee E, Lee ST, Cheong HT, Yang BK, et al. Effect of nicotinic acid on fresh semen characteristics in miniature pigs. Journal of Embryo Transfer 2014; 29(4): 385-391.
  15. Joshi R, Adhikari S, Patro BS, Chattopadhyay S, Mukherjee T. Free radical scavenging behavior of folic acid: evidence for possible antioxidant activity. Free Radic Biol Med 2001; 30(12): 1390-9.
  16. Kim YJ, Lee SH, Lee YJ, Oh HI, Cheong HT, Yang B, et al. Effect of nicotinic acid on sperm characteristic and oocyte development after in vitro fertilization using cryopreserved boar semen. Journal of Embryo Transfer 2015; 30(1): 7-15.
  17. Pietrzik K, Bailey L, Shane B. Folic acid and L-5-methyltetrahydrofolate: comparison of clinical pharmacokinetics and pharmacodynamics. Clin Pharmacokinet 2010; 49(8): 535-48.
  18. Cooper TG, Noonan E, von ES, Auger J, Baker HW, Behre HM, et al. World Health Organization reference values for human semen characteristics. Hum Reprod Update 2010; 16(3): 231-45.
  19. Rarani FZ, Golshan-Iranpour F, Dashti GR. Correlation between sperm motility and sperm chromatin/DNA damage before and after cryopreservation and the effect of folic acid and nicotinic acid on post-thaw sperm quality in normozoospermic men. Cell Tissue Bank 2019; 20(3): 367-78.
  20. Golshan-Iranpour f, Zamani Rarani F, Dashti GR. Effect of chromatin condensation on frozen-thawed sperm DNA integrity in normozoospermic men. Sci J Kurdistan Univ Med Sci 2019; 24(3): 34-42. [In Persian].
  21. Subramanian V, Ravichandran A, Thiagarajan N, Govindarajan M, Dhandayuthapani S, Suresh S. Seminal reactive oxygen species and total antioxidant capacity: Correlations with sperm parameters and impact on male infertility. Clin Exp Reprod Med 2018; 45(2): 88-93.
  22. Hosseinzadeh CA, Karimi F, Jorsaraei SG. Correlation of sperm parameters with semen lipid peroxidation and total antioxidants levels in astheno- and oligoasheno- teratospermic men. Iran Red Crescent Med J 2013; 15(9): 780-5.
  23. Martinez G, Daniels K, Chandra A. Fertility of men and women aged 15-44 years in the United States: National Survey of Family Growth, 2006-2010. Natl Health Stat Report 2012; (51): 1-28.
  24. Hosen MB, Islam MR, Begum F, Kabir Y, Howlader MZ. Oxidative stress induced sperm DNA damage, a possible reason for male infertility. Iran J Reprod Med 2015; 13(9): 525-32.
  25. Tavilani H, Doosti M, Saeidi H. Malondialdehyde levels in sperm and seminal plasma of asthenozoospermic and its relationship with semen parameters. Clin Chim Acta 2005; 356(1-2): 199-203.
  26. Huang WJ, Lu XL, Li JT, Zhang JM. Effects of folic acid on oligozoospermia with MTHFR polymorphisms in term of seminal parameters, DNA fragmentation, and live birth rate: a double-blind, randomized, placebo-controlled trial. Andrology 2020; 8(1): 110-6.
  27. Salarkia E, Sepehri G, Torabzadeh P, Abshenas J, Saberi A. Effects of administration of co-trimoxazole and folic acid on sperm quality and histological changes of testes in male rats. Int J Reprod Biomed 2017; 15(10): 625-34.
  28. Toghiani S, Hayati RN, Dashti GR, Rouzbehani S. The effects of vitamin C and menthone on acyclovir induced DNA damage in rat spermatozoa: An experimental study. Int J Reprod Biomed 2018; 16(11): 703-10.
  29. Barik G, Chaturvedula L, Bobby Z. Role of oxidative stress and antioxidants in male infertility: An interventional study. J Hum Reprod Sci 2019; 12(3): 204-9.
مجله دانشکده پزشکی اصفهان
دوره 38، شماره 603 - شماره پیاپی 603
بهمن و اسفند 1399
صفحه 921-928

فایل ها

سابقه مقاله

  • تاریخ دریافت: 13 شهریور 1399
  • تاریخ بازنگری: 11 آبان 1403
  • تاریخ پذیرش: 17 فروردین 1401

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار